세포고정

검체의 종류, 취급요령

질, 자궁경부, 자궁내막도말

- 검체는 한번에 많이 채취한 후 즉시 슬라이드에 균일하게 도말하고 95% ethylalcohol 또는 분무 고정액으로 고정한다.

- 고정액을 담은 용기는 도말하기 전에 대기 건조에 의한 인공산물을 피하기 위하여 사용하기 쉽게 가까운 곳에 두어야하며

  이 대기 건조에 의한 인공산물은 불충분한 검체의 원인이 될 수도 있다.

- 검체 채취 하루전에 질내 치료나 피임약제등의 사용을 금해 주십시오.

- 검체 채취전 외상이나 biopsy등을 행하지 마십시오. 혈액의 적혈구가 도말되어 판독이 어려워집니다.

소변(urine)

- 모든 배뇨된 소변은 깨끗하게 중간 소변을 받아야 하고 첫 소변은 버린다. 채취한 소변은 채취후 가능한 빨리

  검사실로 보내져야하며 지체없이 보내지는 검사물은 고정액이 필요없다. 1500rpm에서 10분 원심하여 침전물을

  슬라이드에 도말한 후 고정하여 보내십시오. 채취후 바로 보내는 것이 불가능하면 냉장고에 보관한다.

- 만약 오래 지체될 경우나 원심이 불가능한 경우 검체에 동량의 50% ethanol을 섞은 후 그대로 보내십시오.

- 세척검사물은 도말을 하고 95% ethanol이 있는 용기에 즉시 고정한다.

체강액

- 삼출액은 응고를 막기 위해 채집할 때 heparin을 첨가해야 하고, heparin 양은 체강액 300ml에 1ml의

  heparin을 섞는다. 검체는 채집한 후 즉시 검사실로 보내야 하며 지연될 것 같으면 냉장고에 보관한다.

- 채취한 양이 많은 경우는 냉장고 안에서 침전시켜 상층을 버리고 하층의 200c를 보내 주시고

  (cell block도 가능함), 도말 slide를 보내실 때는 4장을 보내주십시오.

- 도말이 불가능할 때 검체 전부를 냉장 보관하여 12-24시간 이내에 보내십시오.

내시경을 통한 브러쉬(솔질)

- 먼저 준비를 해 놓은 slide에 빨리 도말을 한 다음 95%ethanol에 한번에 고정한다. 대기 건조는 피해야한다.

뇌척수액

- CSF는 채집한 후 즉시 도말하거나. 지연될 것 같으면 동량의 50% ethanol 보존제를 첨가한다.

세침흡인(유방, 갑상선, 림프절등)

- 여러 장의 slide에 가급적 혈액을 제거한 후 세포가 골고루 도말될 수 있도록한다. 도말 후 즉시 95% 알코올에 고정한다.

- Wright Giemsa stain을 위하여 한두장 정도를 air dry시킨다.

- 검체량이 적은 경우 주사바늘과 주사통을 생리 식염수로 세정하고 원심하여, 침전물을 도말 후 고정하십시오.

- 검체가 많이 남아 있을 경우 cell block을 위하여 고정액을 첨가하여 syringe채로 보내주십시오.

PH가 낮은 검체 :위액, 담즙등

- 검체는 얼음을 채운 box에 보관하고, 가능하면 수분이내에 원심으로 도말 slide를 만들고 고정하십시오.

  불가능한 경우 70%알코올을 검체의 1/3-1/4정도의 양이 되도록 넣은 후 얼음 box에 넣에 즉시 보내십시오.